თავფურცელი

Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимая регуляция транспорта
кальция саркоплазматическим ретикулумом миокарда
при токсико-аллергическом миокардите

 Е.В. Яровая, М. И. Кигурадзе,    Н.В. Карсанов
Республиканский научно-исследовательский центр медицинской биофизики
и  внедрения новых биомедицинских технологий им. акад. Н. В. Карсанова

 С целью выяснения субклеточного механизма развития недостаточности сердца при воспалительных повреждениях миокарда был изучен транспорт Са2+ мембранами кардиомиоцита кроликов при токсико-аллергическом миокардите (ТАМ). Было установлено, что одновременно с падением способности системы контрактильных белков миокарда генерировать силу и производить работу и развитием энергетического дефицита происходит значительное снижение способности саркоплазматичнского ретикулума (СР)  миокарда связывать, поглощать и высвобождать Са2+ 1.

Известно, что регуляция функционирования  Са2+-насоса СР в миокарде осуществляется цАМФ- и Са2+-кальмодулин-зависимыми протеинкиназами 2, которые сопряжено фосфорилируя фосфоламбан, устраняют его ингибиторное действие на Са2+-насос и тем самым активируют поглощение Са2+ СР 3,4. Имеются данные о фосфорилировании указанными протеинкиназами и рианодинового рецептора (основной белковый компонент Са2+ -освобождающего канала СР), однако участие этого процесса в механизме освобождения Са2+  из СР все еще остается неясным 5,6.

В настоящей работе исследовано влияние Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимого фосфорилирования СР на поглощение Са2+  при ТАМ.

Материал и методы: Работа проведена на 53 кроликах породы шиншилла массой 2,5-3,0 кг. Из них 28 кроликов были практически здоровыми – нормальные (16 кроликов составили группу контрольных животных, сердца 12 кроликов были использованы для получения фосфоламбана),  25 – с ТАМ 10-ти дневной продолжительности, который воспроизводили по методу С.В. Андреева и М.В. Соколова 7. Суммарный препарат СР выделяли по методу  Harigaya S., Schwartz А. 8. Дальнейшее фракционирование препарата проводили путем частичного насыщения везикул СР оксалатом Са2+ и центрифугирования в ступенчатом градиенте плотности сахарозы. суммарную фракцию СР разделяли на кофеин-чувствительную субфракцию, содержащую систему Са2+-зависимого освобождения Са2+ («контактный» СР) и субфракцию «свободного» СР, осуществляющего реаккумуляцию Са2+ 9,10. Стандартная инкубационная среда для определения поглощения  Са2+ содержала  20mM трис-малеатный буфер  (pH 6,8), 100 mM KCl, 10 mM MgCl2, 2 mM двунатриевую соль ATФ, 5 mM  оксалат калия и мембранный белок в концентрации 20-70 мг/мл. Реакцию начинали добавлением 50 или 100 мкM [45]CaCl2 после прединкубационного периода (1 мин). Частично очищенный фосфоламбан в комплексе с Са2+ -кальмодулин-зависимой протеинкиназой получали так же из суммарного препарата СР миокарда нормальных кроликов по методу Jones L.R. et al. 11. Фосфорилирование суммарного препарата СР и фосфорилирование фосфоламбана эндогенной Са2+-кальмодулин-зависимой протеинкиназой и экзогенной цАМФ-зависимой протеинкиназой проводили по методу Seiler S. et al. с использованием [g-32P] АТФ и техники миллипоровой фильтрации 5. Радиоактивность проб определяли на жидкостно-сцинтилляционном счетчике Дельта-300 (“Searle”, Голландия). Данные обработаны статистически с использованием критерия t Стьюдента и программ STAT Soft.

Результаты и их обсуждение:  Показано, что в присутствии экзогенноного кальмодулина уровень фосфорилирования СР нормального миокарда повышается на 63%, а в присутствии экзогенной цАМФ-зависимой протеинкиназы – на 55%. Их совместное действие ведет к увеличению фосфорилирования на 137% (табл. 1). При этом внесение в среду инкубации кальмодулина активирует уровень поглощения Са2+ СР на 55%, цАМФ-зависимой протеинкиназы – на 74%, а совместное воздействие кальмодулина и цАМФ-зависимой протеинкиназы дает аддитивный эффект – поглощение Са2+  возрастает на 145% (табл. 2).

При Там внесение кальмодулина и цАМФ-зависимой протеинкиназы (в отдельности и совместно), в отличие от нормы, не вызывает активации ни процесса фосфорилирования (табл.1), ни транспорта Са2+  СР (табл. 2).

 Таблица  1.

Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимое фосфорилирование СР (нмоль Pн/мг белка)

Группа

Базальный

уровень

Са2+ +

кальмодулин

цАМФ +

цАМФ-зависимая

протеинкиназа

Са2+ +

кальмодулин +

цАМФ-зависимая протеинкиназа

Контроль

0,87±0,11

1,42±0,17

1,35±0,18

2,07±0,19+

ТАМ

0,58±0,08*

0,60 ±0,06***

0,63±0,09**

0,51±0,07***

Примечание: * - сравнение с контролем;   + - сравнение с базальным уровнем; один знак –  p< 0,05; два –  < 0,01; три – < 0,001

Таблица 2.

Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимое поглощение Са2+ СР (нмоль Са2+/мг белка)

Группа

Базальный уровень

Са2+

+

кальмодулин

цАМФ-зависимая протеинкиназа

Са2++кальмоду-лин+цАМФ-зависимая протеинкиназа

Контроль

699±57

1083±53+

1215±134+++

1712±199+++

ТАМ

456±42*

464±40**

477±25***

441±51***

Примечание: обозначения те же, что и в табл. 1.

Кофеин и термостабильный белок-ингибитор цАМФ-зависимой протеинкиназы в присутствии ЭГТА существенно не изменяют уровень фосфорилирования «контактного» СР ни в норме, ни при ТАМ. В то же время в норме кальмодулин в присутствии Са2+  значительно, в  2  раза стимулирует фосфорилирование «контактного» СР. Этот стимулирующий эффект полностью снимается кофеином. В отличие от кальмодулина, экзогенная цАМФ-зависимая протеинкиназа на уровень фосфорилирования «контактного» СР влияния не оказывает (табл. 3).

При ТАМ кальмодулин почти в такой же степени, что и в норме (в 2,1 раза) активирует фосфорилирование «контактного» СР, а кофеин также снимает этот эффект. Отсутствие действия цАМФ-зависимой протеинкиназы имеет место и при кардиомиопатии, обусловленной ТАМ (табл.3).

В «свободном» СР кофеин и белок-ингибитор цАМФ-зависимой протеинкиназы также, как и в «контактном» СР, не оказывают воздействия на базальный уровень фосфорилирования (немного превышающий базальный уровень фосфорилирования суммарной фракции СР). Однако, в отличие от «контактного» СР, добавление кальмодулина в контроле в инкубационную среду не ведет к стимуляции процесса фосфорилирования, тогда как цАМФ-зависимая протеинкиназа в 1,8 раза повышает его. Этот стимулирующий эффект снимается как белком-ингибитором цАМФ-зависимой протеинкиназы, так и кофеином (табл.3).

 Базальный уровень фосфорилирования комплекса фосфоламбана с эндогенной Са2+-кальмодулин-зависимой протеинкиназой в 2,4 раза превышает базальный уровень фосфорилирования суммарной фракции СР. В то же время фосфоламбан СР миокарда нормальных кроликов в этом комплексе способен в весьма значительной степени фосфорилироваться как кальмодулином (процесс возрастает в 8,3 раза), так и экзогенной цАМФ-зависимой протеинкиназой (возрастает в 8,5 раза). Однако фосфоламбан, выделенный из сердец кроликов с ТАМ, как и суммарный препарат СР, теряет

способность фосфорилироваться  как под воздействием кальмодулина, так и цАМФ-зависимой протеинкиназы. Более того, при ТАМ в 3,2 раза снижается базальный уровень фосфорилирования фосфоламбана  (табл. 4).

Таблица 4.

Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимое фосфорилирование фосфоламбана, нмоль Фн/мг белка

Группа

Базальный

уровень

 Са2+ +

кальмодулин

цАМФ + цАМФ-зависимая

протеинкиназа

Контроль

2,14 ± 0,33

17,2 ± 2,5+

18,2 ± 2,1+

ТАМ

0,67 ± 0,06*

0,73 ± 0,15*

0,81 ± 0,11*

Примечание: обозначения те же, что и в табл. 1.

 Полученные результаты  подтверждают данные, что кальмодулин- и цАМФ-зависимые протеинкиназы свое стимулирующее действие на активный транспорт Са2+  СР сердца оказывают путем фосфорилирования  разных  участков  фосфоламбана,  один  из  которых  фосфорилируется Са2+-кальмодулин-зависимой протеинкиназой, ассоциированной с фосфоламбаном (фосфоламбанкиназой), а другой –  цитоплазматической цАМФ-зависимой протеинкиназой 2,12.  При этом в нативном СР сердца фосфоламбан в дефосфорилированном состоянии действует как ингибитор Са2+-насоса, а фосфорилирование фосфоламбана необходимо для снятия ингибирования. В аспекте таких представлений резкое снижение поглощения Са2+  суммарной фракцией СР при Там может быть связано с утерей «свободным» СР способности к Са2+ кальмодулин- и цАМФ-зависимым фосфорилированиям.  К такому выводу позволяют прийти и ранее полученные данные по действию трифторперазина и термостабильного белка-ингибитора цАМФ-зависимой протеинкиназы на поглощение Са2+ СР, указывающие на низкий уровень фосфорилирования СР миокарда кроликов с ТАМ 13.

Что касается нарушения фосфорилирования фосфоламбана при ТАМ, то одной из причин этого явления могло бы быть уменьшение содержания в мембранах СР эндогенного кальмодулина, что имело бы ключевое значение в нарушении транспорта Са2+, так как для активирования цАМФ-зависимого транспорта Са2+ необходимо предварительное фосфорилирование участка фосфоламбана, катализируемого Са2+-кальмодулин-зависимой протеинкиназой 2,13. Однако наши данные об отсутствии фосфорилирования комплекса фосфоламбан – эндогенная Са2+-кальмодулин-зависимая протеинкиназа при добавлении экзогенного кальмодулина при ТАМ указывают на несостоятельность такого предполжения.

Нельзя объяснить нарушение фосфорилирования СР при ТАМ и изменением белкового состава мембран, так как он не отличается от нормы. Возможно, причиной возникновения этого явления может быть нарушение образования полифосфоинозитидов во время реакции фосфорилирования 14, так как было показано, что уровень фосфорилирования очищенного фосфоламбана (лишенного фосфолипидов) намного ниже, чем фосфоламбана в структуре везикул СР, и что добавление к очищенному препарату фосфоламбана фосфотидилинозитола  восстанавливает уровень его фосфорилирования  3,4.

снижение уровня фосфорилирования фосфоламбана при ТАМ может происходить из-за изменения фосфолипидного микроокружения фосфоламбана, что вызывает конформационные изменения, которые могут играть ключевую роль в фосфорилировании фосфоламбана и во взаимодействии последнего с Са2+ -насосом 12,14.

Наши данные по фосфорилированию субфракций СР в норме подтверждают гипотезу Gasser et al. 15, что разные отделы ретикулума находятся под контролем различных регуляторных систем. Они свидетельствуют, что цАМФ-зависимое фосфорилирование наблюдается только в  продолговатых трубочках, а кальмодулин-зависимое – в терминальных цистернах, и это несмотря на присутствии эндогенной кальмодулин-зависимой протеинкиназы во всех субфракциях ретикулума. Аналогичные данные были получены нами и в экспериментах на собаках 16.  

Так как при ТАМ фосфорилирование «контактного» СР под влиянием кальмодулина не претерпевает существенных изменений по сравнению с нормой, а фосфорилирование «свободного» СР достоверно снижается, то можно сделать вывод, что снижение фосфорилирования суммарной фракции СР миокарда и отсутствие кальмодулин- и цАМФ-зависимого фосфорилирования при ТАМ обусловлены исключительно нарушением фосфорилирования «свободного» СР.Тот факт, что при ТАМ «контактный» СР подвергается кальмодулин-зависимому фосфорилированию, тогда как суммарный препарат СР под воздействием кальмодулина не фосфорилируется, предположительно можно объяснить потерей мембранами в процессе субфракционирования СР ингибиторов протеинкиназ или протеинфосфотаз, дефосфорилирующих СР.


Таблица 3.

Са2+-кальмодулин- и цАМФ-зависимое фосфорилирование субфракций  СР, нмоль Фн/мг белка

СР

группа

Базальный

уровень

кофеин

Са2+ -

кальмодулин

Са2+-

кальмодулин

+

кофеин

цАМФ-

зависимая

протеин-

киназа

цАМФ-

зависимая протеин-киназа

+ кофеин

«Контактный»

Контроль

0,87±0,10

0,99±0,18

1,79±0,30++

0,70±0,22##

0,84±0,21

0,85±0,14

ТАМ

0,58±0,08

0,71±0,11

1,44±0,26+

0,50±0,07###

0,71±0,12

0,56±0,07

«Свободный»

Контроль

1,12±0,11

1,16±0,15

0,95±0,16

0,84±0,14

2,0±0,3+

1,15±0,21

ТАМ

0,67± 0,18**

0,69±0,09**

0,59±0,05**

0,73±0,14

0,81±0,19**

0,55±0,07**

 Примечание: #  - сравнение с действием кофеина, остальные обозначения те же, что и в табл.

 Ингибирование кальмодулин-зависимого фосфорилирования «контактного» СР кофеином может указывать на роль кальмодулин-зависимого фосфорилирования в «запирании» Са2+-каналов «контактного» СР. Однако имеющиеся на сегодняшний день литературные данные о роли фосфорилирования в Са2+-зависимом освобождении Са2+ из СР противоречивы. С одной стороны, результаты, полученные на основании непрямых экспериментов, позволяют думать о важной роли фосфорилирования в функционировании Са2+-освобождающего канала СР 6,14, с другой – имеются данные, свидетельствующие об обратном 4,12. Кроме того установлено, что экзогенный кальмодулин уменьшает скорость освобождения Са2+ из везикул СР в отсутствии АТФ (без вовлечения в процесс реакции кальмодулин-зависимого фосфорилирования) 17. Таким образом, вопрос о роли фосфорилирования в освобождении Са2+ из СР на сегодняшний день остается не вполне ясным.

 Литература:

1.        Н.В.Карсанов Хугашвили З.Г.,  Мамулашвили Л.Д. и соавт. Механическая активность системы контрактильных белков, энергетическая обеспеченность миокарда и нарушение транспорта кальция при воспалительных поражениях миокарда. Кардиология.1984; 24(1): 80-85.

2.        LePeuch C.J., Haiech J., Demaile J.G. Concerned regulation of cardiac sarcoplasmic reticulum calcium transport by cyclic adenosine monophosphate dependent and calcium-calmodulin-dependent phosphorylations. Biochemistry, 1979;18(23):5150-5154.

3.        Zhang P., Kelley J., Schmeisser G. +евозможен вход через -насос.змерение освобождения в условиях, когдантрации ниже уровня, или по исчерпании емкости везикул, илиet al. Complex formation between junctin, triaclin, calsequestrin, and the ryanodine receptor: proteins of the sarcoplasmic reticulum membrane. J.Biol. Chem., 1998;272:23389-23397.

4.        Singh P., Salih M., Leddy J., Tuana B. The muscle specific calmodulin-dependent protein-kinase assembles with the glycolitic enzyme at the sarcoplasmic reticulum. J. Biol. Chem., 2004; 279(34): 35176-35182.

5.        Seiler S., Wegener A., Whang D. et al. High molecular weght proteins in cardiac and skeletal muscle junctional sarcoplamic retckulum vesicles bind calmodulin, are phosphorilated and are degraded by Са2+-activated protease. J. Biol.Chem., 1984;259(13):8550-8554.

6.        Aoyagi T., Fugii M., Flanagan M. et al. Maturation-dependent differences in regulation of sarcoplasmic reticulum Ca2+  ATPase in myocardium.  Pediatr. Res., 2001; 50: 246-253.

7.        Андреев С.В., Соколов М.В. Значение гипоксического компонента в патогенезе токсического миокардита. В сб.: Саногенез, М.,1968;91-92.

8.        Harigaya S., Schwartz A. Rate of calcium binding and uptake in normal animal and failing human cardiac muscle. Membrane vesicles (relaxing system) and mitochondria. Circ. Res. 1969; 25(6):781-794.

9.        Jones L.R., Cala S.E. Biochemical evidence for functional heterogenety of cardiac sarcoplasmic reticulum vesicles. J. Biol. Chem., 1981; 256(22): 11809-11902.

10.     Беневоленский Д.С., Меньшикова Е.В., Феттер Р. и соавт., Са2+-индуцированный выброс Са2+ из саркоплазматического ретикулума сердца. Биол. мембраны, 1986;3(7):668-671.

11.     Jones L.R., Simmerman H.K., Wilson W.W.  et al. Purification and characterization of phospholamban from canine cardiac sarcoplasmic reticulum. J. Biol.Chem., 1985; 260(12):7721-7730.

12.     Hudmon A., Schulman H. calmodulin-dependent protein-kinase assembles with the sarcoplasmic reticulum. Biochem. J., 2002; 364: 593-611.

13.     Карсанов Н.В., Хугашвили З.Г. Влияние кальмодулина- и 3’:5’-АМФ-зависимых протеинкиназ на транспорт Са2+ саркоплазматическим ретикулумом миокарда кроликов в норме и при токсико-аллергическом миокардите. Биохимия, 1983; 48(8):1359-1362.

14.     Movsesian M.A., Schwinger R. Calcium sequestration by sarcoplasmic reticulum in heart failure. Circ. Res., 1998; 37:352-359.

15.     Gasser J., Paganetti P., Carafoli E., Chiesi M. Geterogeneous distribution of calmodulin- and cAMP-dependent regulation of Ca2+ uptake in cardiac sarcoplasmic reticulum subfraction. Eur. J.Biochem.,1988;176(3):535-538.

16.     Хананашвили М.М., Карсанов Н.В., Хугашвили З.Г. и соавт. Нарушение Са2+-кальмодулин (СаМ)- и сАМР-зависимой регуляции транспорта Са2+ саркоплазматическим ретикулумом миокарда собак при экспериментальной информационной болезни. Физиология человека, 1992;18(2):49-54.

17.     Meissner G., Henderson J.S. Rapid calcium release from cardiac sarcoplasmic reticulum vesicles is dependent on Ca2+  and is modulated by Mg2+, adenine nucleotide and calmodulin. J. Biol. Chem.,1987; 262(7):3065-3075.

თავფურცელი